References

fruit

Плодоводство

Fruit Growing

0134-9759

Институт плодоводства

fruit-124

Research Article

ПЛОДОВОДСТВО И ЯГОДОВОДСТВО В БЕЛАРУСИ

FRUIT AND SMALL FRUIT GROWING IN ВELARUS

Введение в культуру in vitro эксплантов винограда в период активного роста

In vitro culture initiation of grape explants at active growth period

Красинская

Т. А.

Krasinskaya

T. A.

ул. Ковалева, 2, аг. Самохваловичи, Минский район, 223013, Беларусь

ул. Долгобродская, 23, г. Минск, 220070, Беларусь

krasinskaya@tut.by

Бирюк

Е. Н.

Biryuk

E. N.

пр. Партизанский, 172, г. Минск, 220075, Беларусь

Республиканское унитарное предприятие «Институт плодоводства»; Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова БГУBelarusРеспубликанское унитарное предприятие «Институт мясо-молочной промышленности»Belarus

2018

23032022

301202211

2022

Красинская Т.А., Бирюк Е.Н.

Krasinskaya T.A., Biryuk E.N.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://fruit.belal.by/jour/article/view/124

При изучении эксплантов сортов винограда межвидовой гибридизации (Regent, Mars, Bianca, Marquette, Агат донcкой) c использованием различных биологически активных веществ отмечено, что генотип растения винограда с высокой степенью достоверности определял способность эксплантов к регенерационным процессам в культуре in vitro. Высокой регенерационной способностью методом прямого органогенеза при выбранных условиях обладал сорт Regent (48,6 %).

Для получения стерильной культуры эффективна 30%-ная перекись водорода экспозицией 10 мин. При стерилизации стоит учитывать тип экспланта: верхушечная часть зеленых черенков и пасынки более чувствительны к данной схеме стерилизации, чем почки без кроющих чешуй.

Использование в модифицированной питательной среде Мурасиге ‒ Скуга только 6-БА в концентрации 1,1 мг/л, как биологически активного соединения, способствует увеличению выхода нормально развитых эксплантов путем прямого органогенеза. В то время как добавление 0,09 мг/л НУК стимулировал каллусогенез у основания эксплантов в количестве 13,4 %, что в 19 раз выше, чем на среде без ауксина.

Grape plant genotype was observed to determine explant regenerative in vitro capacity with a high degree of confidence when studying grape cultivar explants of cross-species hybridization (‘Regent’, ‘Mars’, ‘Bianca’, ‘Marquette’, ‘Agat donskoi’) using biologically active compounds. ‘Regent’ cultivar had the high regenerative capacity (48.6 %) by the mean of a direct organogenesis at the selected conditions.

30 % hydrogen peroxide is effective to produce sterile culture with exposition for 10 minutes. It should be take into account explants type at sterilization: apical parts of green cuts and lateral shoot are more sensitive than buds without cover scale.

1.1 mg/L 6-BА only as a biologically active compound in a modified MS medium helps to increase normally developed explants output by the mean of a direct organogenesis. Meanwhile, 0.09 mg/L NAA stimulates callusogenesis at the e[plant base by 13.4 % which is 19 times higher as for the medium with no auxin.

Vitis L.MarsMarquetteBiancaRegentАгат донскойкультура in vitroвведение в культуру in vitroстерилизация эксплантовБеларусь

Vitis L.‘Mars’‘Marquette’‘Bianca’‘Regent’‘Agat donskoi’in vitro culturein vitro culture initiationexplants sterilizationBelarus

References1

Preece, J. E. The role of plant propagation at clonal genebanks / J. E. Preece // Acta Hort. – 2013. – Vol. 988. – P. 107‒114.

Бугаенко, Л.О. Морфогенез винограда в культуре in vitro / Л. О. Бугаенко, Л. В. Иванова-Ханина // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. Сер. Биология, химия. – 2011. – Т. 24 (63), № 2. – С. 73‒82.

Дорошенко, Н.П. Особенности клонального микроразмножения винограда / Н. П. Дорошенко. – Новочеркасск: Изд-во ФГБНУ ВНИИВиВ им. Я. И. Потапенко, 2014. – С. 15‒47.

Дорошенко, Н. П. Применение препарата Эмистим на этапе ввода при оздоровлении винограда от вирусной инфекции / Н. П. Дорошенко // Виноделие и виноградарство. – 2007. – № 6. – С. 37‒41.

Зеленянская, Н. Н. Эффективные желирующие компоненты для размножения винограда in vitro / Н. Н. Зеленянская, Л. В Джабурия, Н. И. Теслюк // Ин-т виноградарства и виноделия им. В. Е. Таирова [Электронный ресурс]. – Украина, 2009. – Режим доступа: http://journal.kubansad.ru/pdf/10/04/09.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

Калинин, Ф. Л. Технология микроклонального размножения растений / Ф. Л. Калинин, Г. П. Кушнир, В. В. Сарнацкая; отв. ред. В. П. Лобов // Ин-т физиологии растений и генетики. – Киев: Навук. думка, 1992. – С. 5‒8, 20‒23.

Кильчевский, А. В. Генетические основы селекции: в 4 т. / А. В. Кильчевский, Л. В. Хотылева. – Минск: Беларуская навука, 2012. – Т. 3: Биотехнология в селекции растений. Клеточная инженерия. – С. 8‒10.

Батукаев, А. А Использование регуляторов роста в системе производства оздоровленного посадочного материала винограда / А. А. Батукаев, А. А. Зармаев, М.С. Батукаев // Тр. БГУ / БГУ. – Минск, 2013. – Т. 8, ч. 2. – С. 44‒48.

Медведева, Н. И. Методические рекомендации по микроклональному размножению винограда in vitro / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2010. – № 62 (08). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2010/08/pdf/31.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

Медведева, Н. И. Особенности микроклонального размножения интродуцентов и клонов винограда / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2008. – № 40 (6). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2008/06/pdf/18.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

Музыченко, Б. А. Способ микроклонального размножения винограда «ин витро» / Б.А. Музыченко, Н. П. Дорошенко // Виноград. – 1995. – Режим доступа: http://www.freepatent.ru/patents/2041609. – Дата доступа: 13.03.2017.

In vitro propagation of grapevine (Vitis vinifera L.) Muscat of Alexandria cv. for conservation of endangerment / A.I.A. Abido [et al.] // Middle-East Journal of Scientific Research. – 2013. – № 13(3). – P. 328–337.

In vitro propagation of grapevine cultivars with potential for South Brazil / J. C. Bettoni [et al.] // American Jornal of Plant Sciences. – 2015. – № 6. – P. 1806‒1815.

Regeneration of GFLV-free grapevines and synchronization of micropropagation in vitro / I. Blažina [et al.] // Acta Horticulturae. – 1991. – № 289. – P. 87‒126.

In vitro Micropropagation of Several Grapevine Cultivars from Romania / A. L. Butiuc-Keul [et al.] // III International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants. – Romania, 2009. – Р. 129-131.

Casal, M. Micropropagation of Vitis vinifera from ‛Vinho verde’ region of Portugal: a method for grapevine leafroll virus elimination / M. Casal, M. Salomѐ and S. Pais // Plant Aging: Basic and Applied approaches. – 1990. – P. 327‒334.

Clonal micropropagation of main grape and rootstock varieties of Turkish viticulture for obtaining virus-free basic nursery stocks / H. Celik [et al.] // Acta Horticulturae. – 2009. – № 827. – P. 421‒424.

Chee, R. A method for large scale in vitro propagation of Vitis / R. Chee, R. M. Pool, D. Bucher // New York’s Food Life Science Bull. – 1984. – № 109. – P. 1‒9.

Grenan, S. Micropropagation of grapevine (Vitis vinifera L.) / S. Grenan // Biotechnology in Agriculture and Foresty. – 1992. – Vol. 18. – P. 371‒398.

Effect of growth hormones on micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Perlette / M. J. Jaskani [et al.] // Pak. J. Bot. – 2008. – № 40 (1). – P. 105‒109.

Jemenez, V.M. Relationship between endogenous hormone levels of grapevine callus cultures and their morphogenetic behavior / V. M. Jemenez and F. Bangerth // Vitis. – 2000. – № 39 (4). – P. 151‒157.

Surface disinfection procedure and in vitro regeneration of grapevine (Vitis vinifera L.) axillary buds / M. F. Laso-Javalera [et al.] // SpringerPlus. – 2016. – № 5. – P. 453‒464.

Ibañez, A. Establishment and in vitro clonal propagation of the Spanish autochthonous table grapevine cultivar Napoleon: an improved system where proliferating cultures alternate with rooting ones / A. Ibañez, M. Valero and A. Morte // Anales de Biología. – 2005. – № 27. – Р. 211‒220.

Poudel, P. R. Effect of plant growth regulators on in vitro propagation of Vitis ficifolia var. ganebu and its interspecific hybrid grape / P. R. Poudel, I. Kataoka and R. Mochioka // Asian Journal of Plant Science. – 2005. – № 4 (5). – P. 466‒471.

Shan, F. Semi-sterilized tissue culture for rapid propagation of grapevines (Vitis vinifera L.) using immature cuttings / F. Shan, K. Seaton // HortScience. – 2014. – № 49 (7). – P. 949‒954.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.