Preview

Плодоводство

Расширенный поиск

Введение в культуру in vitro эксплантов винограда в период активного роста

Аннотация

При изучении эксплантов сортов винограда межвидовой гибридизации (Regent, Mars, Bianca, Marquette, Агат донcкой) c использованием различных биологически активных веществ отмечено, что генотип растения винограда с высокой степенью достоверности определял способность эксплантов к регенерационным процессам в культуре in vitro. Высокой регенерационной способностью методом прямого органогенеза при выбранных условиях обладал сорт Regent (48,6 %).

Для получения стерильной культуры эффективна 30%-ная перекись водорода экспозицией 10 мин. При стерилизации стоит учитывать тип экспланта: верхушечная часть зеленых черенков и пасынки более чувствительны к данной схеме стерилизации, чем почки без кроющих чешуй.

Использование в модифицированной питательной среде Мурасиге ‒ Скуга только 6-БА в концентрации 1,1 мг/л, как биологически активного соединения, способствует увеличению выхода нормально развитых эксплантов путем прямого органогенеза. В то время как добавление 0,09 мг/л НУК стимулировал каллусогенез у основания эксплантов в количестве 13,4 %, что в 19 раз выше, чем на среде без ауксина.

Об авторах

Т. А. Красинская
Республиканское унитарное предприятие «Институт плодоводства»; Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова БГУ
Беларусь

ул. Ковалева, 2, аг. Самохваловичи, Минский район, 223013, Беларусь

ул. Долгобродская, 23, г. Минск, 220070, Беларусь



Е. Н. Бирюк
Республиканское унитарное предприятие «Институт мясо-молочной промышленности»
Беларусь

пр. Партизанский, 172, г. Минск, 220075, Беларусь



Список литературы

1. Preece, J. E. The role of plant propagation at clonal genebanks / J. E. Preece // Acta Hort. – 2013. – Vol. 988. – P. 107‒114.

2. Бугаенко, Л.О. Морфогенез винограда в культуре in vitro / Л. О. Бугаенко, Л. В. Иванова-Ханина // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. Сер. Биология, химия. – 2011. – Т. 24 (63), № 2. – С. 73‒82.

3. Дорошенко, Н.П. Особенности клонального микроразмножения винограда / Н. П. Дорошенко. – Новочеркасск: Изд-во ФГБНУ ВНИИВиВ им. Я. И. Потапенко, 2014. – С. 15‒47.

4. Дорошенко, Н. П. Применение препарата Эмистим на этапе ввода при оздоровлении винограда от вирусной инфекции / Н. П. Дорошенко // Виноделие и виноградарство. – 2007. – № 6. – С. 37‒41.

5. Зеленянская, Н. Н. Эффективные желирующие компоненты для размножения винограда in vitro / Н. Н. Зеленянская, Л. В Джабурия, Н. И. Теслюк // Ин-т виноградарства и виноделия им. В. Е. Таирова [Электронный ресурс]. – Украина, 2009. – Режим доступа: http://journal.kubansad.ru/pdf/10/04/09.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

6. Калинин, Ф. Л. Технология микроклонального размножения растений / Ф. Л. Калинин, Г. П. Кушнир, В. В. Сарнацкая; отв. ред. В. П. Лобов // Ин-т физиологии растений и генетики. – Киев: Навук. думка, 1992. – С. 5‒8, 20‒23.

7. Кильчевский, А. В. Генетические основы селекции: в 4 т. / А. В. Кильчевский, Л. В. Хотылева. – Минск: Беларуская навука, 2012. – Т. 3: Биотехнология в селекции растений. Клеточная инженерия. – С. 8‒10.

8. Батукаев, А. А Использование регуляторов роста в системе производства оздоровленного посадочного материала винограда / А. А. Батукаев, А. А. Зармаев, М.С. Батукаев // Тр. БГУ / БГУ. – Минск, 2013. – Т. 8, ч. 2. – С. 44‒48.

9. Медведева, Н. И. Методические рекомендации по микроклональному размножению винограда in vitro / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2010. – № 62 (08). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2010/08/pdf/31.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

10. Медведева, Н. И. Особенности микроклонального размножения интродуцентов и клонов винограда / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2008. – № 40 (6). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2008/06/pdf/18.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.

11. Музыченко, Б. А. Способ микроклонального размножения винограда «ин витро» / Б.А. Музыченко, Н. П. Дорошенко // Виноград. – 1995. – Режим доступа: http://www.freepatent.ru/patents/2041609. – Дата доступа: 13.03.2017.

12. In vitro propagation of grapevine (Vitis vinifera L.) Muscat of Alexandria cv. for conservation of endangerment / A.I.A. Abido [et al.] // Middle-East Journal of Scientific Research. – 2013. – № 13(3). – P. 328–337.

13. In vitro propagation of grapevine cultivars with potential for South Brazil / J. C. Bettoni [et al.] // American Jornal of Plant Sciences. – 2015. – № 6. – P. 1806‒1815.

14. Regeneration of GFLV-free grapevines and synchronization of micropropagation in vitro / I. Blažina [et al.] // Acta Horticulturae. – 1991. – № 289. – P. 87‒126.

15. In vitro Micropropagation of Several Grapevine Cultivars from Romania / A. L. Butiuc-Keul [et al.] // III International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants. – Romania, 2009. – Р. 129-131.

16. Casal, M. Micropropagation of Vitis vinifera from ‛Vinho verde’ region of Portugal: a method for grapevine leafroll virus elimination / M. Casal, M. Salomѐ and S. Pais // Plant Aging: Basic and Applied approaches. – 1990. – P. 327‒334.

17. Clonal micropropagation of main grape and rootstock varieties of Turkish viticulture for obtaining virus-free basic nursery stocks / H. Celik [et al.] // Acta Horticulturae. – 2009. – № 827. – P. 421‒424.

18. Chee, R. A method for large scale in vitro propagation of Vitis / R. Chee, R. M. Pool, D. Bucher // New York’s Food Life Science Bull. – 1984. – № 109. – P. 1‒9.

19. Grenan, S. Micropropagation of grapevine (Vitis vinifera L.) / S. Grenan // Biotechnology in Agriculture and Foresty. – 1992. – Vol. 18. – P. 371‒398.

20. Effect of growth hormones on micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Perlette / M. J. Jaskani [et al.] // Pak. J. Bot. – 2008. – № 40 (1). – P. 105‒109.

21. Jemenez, V.M. Relationship between endogenous hormone levels of grapevine callus cultures and their morphogenetic behavior / V. M. Jemenez and F. Bangerth // Vitis. – 2000. – № 39 (4). – P. 151‒157.

22. Surface disinfection procedure and in vitro regeneration of grapevine (Vitis vinifera L.) axillary buds / M. F. Laso-Javalera [et al.] // SpringerPlus. – 2016. – № 5. – P. 453‒464.

23. Ibañez, A. Establishment and in vitro clonal propagation of the Spanish autochthonous table grapevine cultivar Napoleon: an improved system where proliferating cultures alternate with rooting ones / A. Ibañez, M. Valero and A. Morte // Anales de Biología. – 2005. – № 27. – Р. 211‒220.

24. Poudel, P. R. Effect of plant growth regulators on in vitro propagation of Vitis ficifolia var. ganebu and its interspecific hybrid grape / P. R. Poudel, I. Kataoka and R. Mochioka // Asian Journal of Plant Science. – 2005. – № 4 (5). – P. 466‒471.

25. Shan, F. Semi-sterilized tissue culture for rapid propagation of grapevines (Vitis vinifera L.) using immature cuttings / F. Shan, K. Seaton // HortScience. – 2014. – № 49 (7). – P. 949‒954.


Рецензия

Для цитирования:


Красинская Т.А., Бирюк Е.Н. Введение в культуру in vitro эксплантов винограда в период активного роста. Плодоводство. 2018;30(1):202-211.

For citation:


Krasinskaya T.A., Biryuk E.N. In vitro culture initiation of grape explants at active growth period. Fruit Growing. 2018;30(1):202-211. (In Russ.)

Просмотров: 249


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0134-9759 (Print)