Идентификация и молекулярная характеристика белорусских изолятов фитоплазмы малины
https://doi.org/10.47612/0134-9759-2023-35-48-53
Аннотация
Сравнение нуклеотидных последовательностей выделенных изолятов с последовательностями, представленными в международной базе данных, показало, что все белорусские изоляты фитоплазмы, выделенные из малины сортов Вольница, Услада, Спутница, Бальзам, Гусар и гибрида 06/1-02-12, относятся к виду Ca. P. rubi. Степень идентичности исследуемых нуклеотидных последовательностей белорусских изолятов Ca. P. rubi и последовательностей из международной базы данных колеблется в пределах 99,21–100,0 %. Кластерный анализ изучаемых и ранее опубликованных нуклеотидных последовательностей фрагмента 16S rRNA гена изолятов Ca. P. rubi показал, что корреляции между группированием изолятов и их географическим происхождением, а также в зависимости от растения, из которого был выделен изолят, не обнаружено.
Об авторах
Т. Н. Божидай
РУП «Институт плодоводства»
Беларусь
Беларусь
ул. Ковалёва, 2, аг. Самохваловичи, Минский район, 223013, Беларусь
Е. В. Колбанова
РУП «Институт плодоводства»
Беларусь
Беларусь
ул. Ковалёва, 2, аг. Самохваловичи, Минский район, 223013, Беларусь
Список литературы
1. Кухарчик, Н. В. Вирусные и фитоплазменные болезни плодовых и ягодных культур в Беларуси / Н. В. Кухарчик. – Минск: Беларус. навука, 2012. – 209 с.
2. Матяшова, Г. А. Разработка и совершенствование методов диагностики фитоплазм – возбудителей болезней плодовых и ягодных культур: дис. … канд. биол. наук: 06.01.07 / Г. А. Матяшова. – М., 2017. – 150 л.
3. Linck, H. Rubus stunt: a review of an important phytoplasma disease in Rubus spp. / H. Linck, A. Reineke // J. of Plant Diseases and Protection. – 2019. – Vol. 126. – P. 393–399.
4. Тихонова, К. О. Распространенность, вредоносность вирусных болезней и эффективные методы оздоровления
5. малины: дис. … канд. с.-х. наук: 06.01.07 / К. О. Тихонова. – М., 2016. – 127 л.
6. Certification scheme for Rubus. EPPO Standards PM 4/10 (2) // Bulletin OEPP/EPPO. – 2009. – Vol. 39. – P. 271–277.
7. Cieslinska, M. Detection and characterization of phytoplasmas associated with diseases of Rubus spp. in Poland / M. Cieslinska // J. of Plant Pathology. – 2011. – Vol. 93(1). – P. 51–56.
8. Deng, S. Amplification of 16S rRNA genes from culturable and nonculturable mollicutes / S. Deng, C. Hiruki // J. of Microbiol. Methods. – 1991. – Vol. 14 (1). – P. 53–61.
9. Molecular and diagnostic procedures in mycoplasmology / ed.: S. Razin, J. G. Tully. – San Diego : Acad. Press, 1995. – 483 p.
10. Gundersen, D. E. Ultrasensitive detection of phytoplasmas by nested-PCR assays using two universal primer pairs / D. E. Gundersen, I.-M. Lee // Phytopathologia Mediterranea. – 1996. – Vol. 35. – P. 144–151.
11. Detection of multiple phytoplasmas in perennial fruit trees with decline symptoms in Italy / I.-M. Lee [et al.] // Phytopathology. – 1995. – Vol. 85. – P. 728–735.
Рецензия
Для цитирования:
Божидай Т.Н., Колбанова Е.В. Идентификация и молекулярная характеристика белорусских изолятов фитоплазмы малины. Плодоводство. 2023;35(2):48-53. https://doi.org/10.47612/0134-9759-2023-35-48-53
For citation:
Bozhidai T.N., Kolbanova E.V. Identification and molecular characteristics of Belarusian raspberry phytoplasma isolates. Fruit Growing. 2023;35(2):48-53. (In Russ.) https://doi.org/10.47612/0134-9759-2023-35-48-53
Просмотров: 131
Послать статью по эл. почте 