In vitro culture initiation of grape explants at active growth period
Abstract
Grape plant genotype was observed to determine explant regenerative in vitro capacity with a high degree of confidence when studying grape cultivar explants of cross-species hybridization (‘Regent’, ‘Mars’, ‘Bianca’, ‘Marquette’, ‘Agat donskoi’) using biologically active compounds. ‘Regent’ cultivar had the high regenerative capacity (48.6 %) by the mean of a direct organogenesis at the selected conditions.
30 % hydrogen peroxide is effective to produce sterile culture with exposition for 10 minutes. It should be take into account explants type at sterilization: apical parts of green cuts and lateral shoot are more sensitive than buds without cover scale.
1.1 mg/L 6-BА only as a biologically active compound in a modified MS medium helps to increase normally developed explants output by the mean of a direct organogenesis. Meanwhile, 0.09 mg/L NAA stimulates callusogenesis at the e[plant base by 13.4 % which is 19 times higher as for the medium with no auxin.
About the Authors
T. A. Krasinskaya
Республиканское унитарное предприятие «Институт плодоводства»; Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова БГУ
Belarus
Belarus
E. N. Biryuk
Республиканское унитарное предприятие «Институт мясо-молочной промышленности»
Belarus
Belarus
References
1. Preece, J. E. The role of plant propagation at clonal genebanks / J. E. Preece // Acta Hort. – 2013. – Vol. 988. – P. 107‒114.
2. Бугаенко, Л.О. Морфогенез винограда в культуре in vitro / Л. О. Бугаенко, Л. В. Иванова-Ханина // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. Сер. Биология, химия. – 2011. – Т. 24 (63), № 2. – С. 73‒82.
3. Дорошенко, Н.П. Особенности клонального микроразмножения винограда / Н. П. Дорошенко. – Новочеркасск: Изд-во ФГБНУ ВНИИВиВ им. Я. И. Потапенко, 2014. – С. 15‒47.
4. Дорошенко, Н. П. Применение препарата Эмистим на этапе ввода при оздоровлении винограда от вирусной инфекции / Н. П. Дорошенко // Виноделие и виноградарство. – 2007. – № 6. – С. 37‒41.
5. Зеленянская, Н. Н. Эффективные желирующие компоненты для размножения винограда in vitro / Н. Н. Зеленянская, Л. В Джабурия, Н. И. Теслюк // Ин-т виноградарства и виноделия им. В. Е. Таирова [Электронный ресурс]. – Украина, 2009. – Режим доступа: http://journal.kubansad.ru/pdf/10/04/09.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.
6. Калинин, Ф. Л. Технология микроклонального размножения растений / Ф. Л. Калинин, Г. П. Кушнир, В. В. Сарнацкая; отв. ред. В. П. Лобов // Ин-т физиологии растений и генетики. – Киев: Навук. думка, 1992. – С. 5‒8, 20‒23.
7. Кильчевский, А. В. Генетические основы селекции: в 4 т. / А. В. Кильчевский, Л. В. Хотылева. – Минск: Беларуская навука, 2012. – Т. 3: Биотехнология в селекции растений. Клеточная инженерия. – С. 8‒10.
8. Батукаев, А. А Использование регуляторов роста в системе производства оздоровленного посадочного материала винограда / А. А. Батукаев, А. А. Зармаев, М.С. Батукаев // Тр. БГУ / БГУ. – Минск, 2013. – Т. 8, ч. 2. – С. 44‒48.
9. Медведева, Н. И. Методические рекомендации по микроклональному размножению винограда in vitro / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2010. – № 62 (08). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2010/08/pdf/31.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.
10. Медведева, Н. И. Особенности микроклонального размножения интродуцентов и клонов винограда / Н. И. Медведева, Н. В. Поливара, Л. П. Трошин // Научный журнал КубГАУ [Электронный ресурс]. – 2008. – № 40 (6). – Режим доступа: http://ej.kubagro.ru/2008/06/pdf/18.pdf. – Дата доступа: 13.03.2017.
11. Музыченко, Б. А. Способ микроклонального размножения винограда «ин витро» / Б.А. Музыченко, Н. П. Дорошенко // Виноград. – 1995. – Режим доступа: http://www.freepatent.ru/patents/2041609. – Дата доступа: 13.03.2017.
12. In vitro propagation of grapevine (Vitis vinifera L.) Muscat of Alexandria cv. for conservation of endangerment / A.I.A. Abido [et al.] // Middle-East Journal of Scientific Research. – 2013. – № 13(3). – P. 328–337.
13. In vitro propagation of grapevine cultivars with potential for South Brazil / J. C. Bettoni [et al.] // American Jornal of Plant Sciences. – 2015. – № 6. – P. 1806‒1815.
14. Regeneration of GFLV-free grapevines and synchronization of micropropagation in vitro / I. Blažina [et al.] // Acta Horticulturae. – 1991. – № 289. – P. 87‒126.
15. In vitro Micropropagation of Several Grapevine Cultivars from Romania / A. L. Butiuc-Keul [et al.] // III International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants. – Romania, 2009. – Р. 129-131.
16. Casal, M. Micropropagation of Vitis vinifera from ‛Vinho verde’ region of Portugal: a method for grapevine leafroll virus elimination / M. Casal, M. Salomѐ and S. Pais // Plant Aging: Basic and Applied approaches. – 1990. – P. 327‒334.
17. Clonal micropropagation of main grape and rootstock varieties of Turkish viticulture for obtaining virus-free basic nursery stocks / H. Celik [et al.] // Acta Horticulturae. – 2009. – № 827. – P. 421‒424.
18. Chee, R. A method for large scale in vitro propagation of Vitis / R. Chee, R. M. Pool, D. Bucher // New York’s Food Life Science Bull. – 1984. – № 109. – P. 1‒9.
19. Grenan, S. Micropropagation of grapevine (Vitis vinifera L.) / S. Grenan // Biotechnology in Agriculture and Foresty. – 1992. – Vol. 18. – P. 371‒398.
20. Effect of growth hormones on micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Perlette / M. J. Jaskani [et al.] // Pak. J. Bot. – 2008. – № 40 (1). – P. 105‒109.
21. Jemenez, V.M. Relationship between endogenous hormone levels of grapevine callus cultures and their morphogenetic behavior / V. M. Jemenez and F. Bangerth // Vitis. – 2000. – № 39 (4). – P. 151‒157.
22. Surface disinfection procedure and in vitro regeneration of grapevine (Vitis vinifera L.) axillary buds / M. F. Laso-Javalera [et al.] // SpringerPlus. – 2016. – № 5. – P. 453‒464.
23. Ibañez, A. Establishment and in vitro clonal propagation of the Spanish autochthonous table grapevine cultivar Napoleon: an improved system where proliferating cultures alternate with rooting ones / A. Ibañez, M. Valero and A. Morte // Anales de Biología. – 2005. – № 27. – Р. 211‒220.
24. Poudel, P. R. Effect of plant growth regulators on in vitro propagation of Vitis ficifolia var. ganebu and its interspecific hybrid grape / P. R. Poudel, I. Kataoka and R. Mochioka // Asian Journal of Plant Science. – 2005. – № 4 (5). – P. 466‒471.
25. Shan, F. Semi-sterilized tissue culture for rapid propagation of grapevines (Vitis vinifera L.) using immature cuttings / F. Shan, K. Seaton // HortScience. – 2014. – № 49 (7). – P. 949‒954.
Review
For citations:
Krasinskaya T.A., Biryuk E.N. In vitro culture initiation of grape explants at active growth period. Fruit Growing. 2018;30(1):202-211. (In Russ.)
Views:
282
Email this article 