Влияние маннита и абсцизовой кислоты на эффективность депонирования представителей Actinidia Lindl. при различных условиях культивирования
Аннотация
Субтропики России, благодаря природно-климатическим условиям, – единственный регион, где можно в промышленных масштабах выращивать A. deliciosa и другие виды рода Actinidia Lindl. В этом регионе растения и плоды актинидии не повреждаются вредителями и болезнями, что исключает целесообразность применения пестицидов. С целью увеличения количества посадочного материала для закладки плантаций необходимо применять оздоровленный высококачественный посадочный материал, выращенный с использованием современных биотехнологических методов. Цель исследований – изучение влияния маннита и абсцизовой кислоты на эффективность депонирования представителей Actinidia Lindl. при различных условиях культивирования. Показано, что способ минимализации роста растений актинидии при низкой положительной температуре и освещенности в условиях in vitro позволяет сохранить жизнеспособные микропобеги без субкультивирования в течение 90–120 сут. Установлено, что после депонирования микропобеги актинидии, пересаженные на питательную среду МС, обладали высокой восстановительной регенерационной способностью. Наибольший процент жизнеспособных микропобегов A. arguta (61,7–68,3 %) и A. deliciosa сорта Hayward (59,7–63,7 %) отмечен после субкультивирования (60–80 дней) с питательной среды, содержащей по 1 мг/л маннита и АБК, и в контроле (без маннита и АБК) при температуре +23 °С и освещенности 2000 лк.
Об авторах
В. И. МаляровскаяРоссия
ул. Яна Фабрициуса, 2/28, г. Сочи, 354002
Ц. В. Тутберидзе
Россия
ул. Яна Фабрициуса, 2/28, г. Сочи, 354002
Т. А. Симонян
Россия
ул. Яна Фабрициуса, 2/28, г. Сочи, 354002
Список литературы
1. Беседина, Т. Д. Экологическая характеристика интродуцированных сортов A. diliciosa в условиях влажных субтропиков России / Т. Д. Беседина, Ц. В. Тутберидзе, С. В. Добежина // Научый журнал КубГАУ. – 2014. – № 100 (06). – С. 79–86.
2. Беседина, Т. Д. Научно обоснованный сортимент актинидии деликатесной для возделывания во влажных субтропиках России / Т. Д. Беседина, Ц. В. Тутберидзе, Н. С. Киселева // Плодоводство и ягодоводство России. – 2019. – № 59. – С. 108–118. – DOI: 10.31676/2073-4948-2019-59-108-118.
3. Ferguson, A. R. Kiwifruit (Actinidia) / A. R. Ferguson // Acta Horticulturae. – 1990. – Vol. 290. – P. 603–653.
4. Разработка режимов среднесрочного хранения in vitro эндемичного вида Campanula sklerophylla Kolak. / Т. М. Коломиец, В. И. Маляровская, С. Л. Губаз, Л. С. Самарина // Роль ботанических садов в сохранении и мониторинге биоразнообразия Кавказа : материалы юбилейн. междунар. науч. конф., Сухум, 6–10 сент. 2016 г. / Ин-т ботаники Акад. наук Абхазии, Гл. ботан. сад им. Н. В. Цицина, Абхаз. отд-ние Рус. ботан. о-ва ; редкол.: Э. Ш. Губаз (отв. ред.) [и др.]. – Сухум, 2016. – С. 240–244.
5. Крицкая, Т. А. Особенности длительного депонирования культуры in vitro некоторых редких и исчезающих видов растений Саратовской области / Т. А. Крицкая, А. С. Кашин // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. – 2016. – Т. 16, вып. 1. – С. 74–80. – DOI: 10.18500/1816-9775-2016-16-1-74-8.
6. Особенности депонирования хризантемы садовой в условиях in vitro / И. В. Митрофанова, Н. Н. Иванова, О. В. Митрофанова, Н. П. Лесникова-Седошенко // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. – 2019. – № 131. – С. 110–117. – DOI: 10.25684/NBG.boolt.131.2019.15.
7. Маляровская, В. И. Влияние факторов культивирования на длительность депонирования in vitro эндемичного вида Campanula sclerophylla Kolak. / В. И. Маляровская, Е. С. Шуркина // Субтропическое и декоративное садоводство. – 2022. – № 81. – С. 98–106. – DOI: 10.31360/2225-3068-2022-81-98-106.
8. Сидорович, Е. А. Влияние осмотических ингибиторов на сохранение жизнеспособности интродуцированных сортов Vaccinium corymbosum L. и Vaccinium vitisidea L. в культуре in vitro / Е. А. Сидорович, Е. Н. Кутас, В. Л. Филипеня // Доклады Академии наук Беларуси. – 1995. – Т. 39, № 1. – С. 63–66.
9. Modeling and optimizing culture medium mineral composition for in vitro propagation of Actinidia arguta / R. Hameg, T. A. Arteta, M. Landin [et al.] // Frontiers in Plant Science. – 2020. – Vol. 11. – P. 2088.
10. Малаева, Е. В. Использование биотехнологических методов для сохранения и поддержания коллекции актинидии в культуре in vitro / Е. В. Малаева, Л. Н. Коновалова, О. И. Молканова // Плодоводство и ягодоводство России. – 2009. – Т. 21. – С. 212–218.
11. Крахмалева, И. В. Особенности клонального микроразмножения разных форм перспективных сортов Actinidia kolomicta (Rupr. et Maxim.) Maxim. / И. В. Крахмалева, О. И. Молканова, Е. В. Малаева // Бюллетень ГНБС. – 2019. – Вып. 133. – С. 80–86. – DOI: 1036305/0513-1634-2019-80-86.
12. Крахмалева, И. Л. Изменение микрометрических признаков устьичного аппарата видов рода актинидия (Actinidia arguta, A. kolomikta, A. polygama) при культивировании in vitro и адаптации ex vitro / И. Л. Крахмалева, О. И. Молканова, Ю. К. Виноградова // Вестник Тверского государственного университета. Серия «Биология и экология». – 2024. – № 1 (73). – С. 123–136.
13. Бутенко, Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе / Р. Г. Бутенко. – М. : ФБК-ПРЕСС, 1999. – 160 с.
14. The effect of cultivation conditions on the growing processes of grape plants in vitro / I. Pavlova, E. Luschay, M. Kosyuk [et al.] // BIO Web of Conferences. – 2021. – Vol. 39. – DOI: 10.1051/bioconf/20213903001.
Рецензия
Для цитирования:
Маляровская В.И., Тутберидзе Ц.В., Симонян Т.А. Влияние маннита и абсцизовой кислоты на эффективность депонирования представителей Actinidia Lindl. при различных условиях культивирования. Плодоводство. 2025;37:240-245.
For citation:
Malyarovskaya V.I., Tutberidze T.V., Simonyan T.A. The effect of mannitol and abscisic acid on storage efficiency of Actinidia Lindl. under different cultivation conditions. Fruit Growing. 2025;37:240-245. (In Russ.)













