The effect of mannitol and abscisic acid on storage efficiency of Actinidia Lindl. under different cultivation conditions
Abstract
Due to its natural and climatic conditions, the subtropical region of Russia is the only area in the country suitable for industrial-scale cultivation of A. deliciosa and other Actinidia Lindl. species. In this region, Actinidia plants and fruits are not affected by pests or diseases, eliminating the need for pesticide application. To establish plantations, it is essential to use sanitized, high-quality planting material produced via modern biotechnological methods. The aim of the study was to investigate the effect of mannitol and abscisic acid on the storage efficiency of Actinidia Lindl. under various cultivation conditions. It was shown that growth minimization of Actinidia plants under low positive temperature and light intensity in vitro allows for the preservation of viable microshoots for 90–120 days without subculturing. It was found that after storage the microshoots of Actinidia transplanted to the MS nutrient medium had a high regenerative ability. The highest percentage of viable microshoots of A. arguta (61.7–68.3 %) and A. deliciosa ‘Hayward’ (59.7–63.7 %) was recorded after subculturing (60–80 days) from a nutrient medium containing 1 mg/L of mannitol and ABA, and in the control (without mannitol and ABA) under light conditions of 2000 lux and an ambient temperature of +23 °C.
About the Authors
V. I. Malyarovskaya
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр «Субтропический научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
T. V. Tutberidze
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр «Субтропический научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
T. A. Simonyan
ФГБУН «Федеральный исследовательский центр «Субтропический научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
References
1. Беседина, Т. Д. Экологическая характеристика интродуцированных сортов A. diliciosa в условиях влажных субтропиков России / Т. Д. Беседина, Ц. В. Тутберидзе, С. В. Добежина // Научый журнал КубГАУ. – 2014. – № 100 (06). – С. 79–86.
2. Беседина, Т. Д. Научно обоснованный сортимент актинидии деликатесной для возделывания во влажных субтропиках России / Т. Д. Беседина, Ц. В. Тутберидзе, Н. С. Киселева // Плодоводство и ягодоводство России. – 2019. – № 59. – С. 108–118. – DOI: 10.31676/2073-4948-2019-59-108-118.
3. Ferguson, A. R. Kiwifruit (Actinidia) / A. R. Ferguson // Acta Horticulturae. – 1990. – Vol. 290. – P. 603–653.
4. Разработка режимов среднесрочного хранения in vitro эндемичного вида Campanula sklerophylla Kolak. / Т. М. Коломиец, В. И. Маляровская, С. Л. Губаз, Л. С. Самарина // Роль ботанических садов в сохранении и мониторинге биоразнообразия Кавказа : материалы юбилейн. междунар. науч. конф., Сухум, 6–10 сент. 2016 г. / Ин-т ботаники Акад. наук Абхазии, Гл. ботан. сад им. Н. В. Цицина, Абхаз. отд-ние Рус. ботан. о-ва ; редкол.: Э. Ш. Губаз (отв. ред.) [и др.]. – Сухум, 2016. – С. 240–244.
5. Крицкая, Т. А. Особенности длительного депонирования культуры in vitro некоторых редких и исчезающих видов растений Саратовской области / Т. А. Крицкая, А. С. Кашин // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. – 2016. – Т. 16, вып. 1. – С. 74–80. – DOI: 10.18500/1816-9775-2016-16-1-74-8.
6. Особенности депонирования хризантемы садовой в условиях in vitro / И. В. Митрофанова, Н. Н. Иванова, О. В. Митрофанова, Н. П. Лесникова-Седошенко // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. – 2019. – № 131. – С. 110–117. – DOI: 10.25684/NBG.boolt.131.2019.15.
7. Маляровская, В. И. Влияние факторов культивирования на длительность депонирования in vitro эндемичного вида Campanula sclerophylla Kolak. / В. И. Маляровская, Е. С. Шуркина // Субтропическое и декоративное садоводство. – 2022. – № 81. – С. 98–106. – DOI: 10.31360/2225-3068-2022-81-98-106.
8. Сидорович, Е. А. Влияние осмотических ингибиторов на сохранение жизнеспособности интродуцированных сортов Vaccinium corymbosum L. и Vaccinium vitisidea L. в культуре in vitro / Е. А. Сидорович, Е. Н. Кутас, В. Л. Филипеня // Доклады Академии наук Беларуси. – 1995. – Т. 39, № 1. – С. 63–66.
9. Modeling and optimizing culture medium mineral composition for in vitro propagation of Actinidia arguta / R. Hameg, T. A. Arteta, M. Landin [et al.] // Frontiers in Plant Science. – 2020. – Vol. 11. – P. 2088.
10. Малаева, Е. В. Использование биотехнологических методов для сохранения и поддержания коллекции актинидии в культуре in vitro / Е. В. Малаева, Л. Н. Коновалова, О. И. Молканова // Плодоводство и ягодоводство России. – 2009. – Т. 21. – С. 212–218.
11. Крахмалева, И. В. Особенности клонального микроразмножения разных форм перспективных сортов Actinidia kolomicta (Rupr. et Maxim.) Maxim. / И. В. Крахмалева, О. И. Молканова, Е. В. Малаева // Бюллетень ГНБС. – 2019. – Вып. 133. – С. 80–86. – DOI: 1036305/0513-1634-2019-80-86.
12. Крахмалева, И. Л. Изменение микрометрических признаков устьичного аппарата видов рода актинидия (Actinidia arguta, A. kolomikta, A. polygama) при культивировании in vitro и адаптации ex vitro / И. Л. Крахмалева, О. И. Молканова, Ю. К. Виноградова // Вестник Тверского государственного университета. Серия «Биология и экология». – 2024. – № 1 (73). – С. 123–136.
13. Бутенко, Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе / Р. Г. Бутенко. – М. : ФБК-ПРЕСС, 1999. – 160 с.
14. The effect of cultivation conditions on the growing processes of grape plants in vitro / I. Pavlova, E. Luschay, M. Kosyuk [et al.] // BIO Web of Conferences. – 2021. – Vol. 39. – DOI: 10.1051/bioconf/20213903001.
Review
For citations:
Malyarovskaya V.I., Tutberidze T.V., Simonyan T.A. The effect of mannitol and abscisic acid on storage efficiency of Actinidia Lindl. under different cultivation conditions. Fruit Growing. 2025;37:240-245. (In Russ.)
Views:
41
JATS XML
Email this article 